PCNA 的 shRNA 的真核表达载体的构建及对子宫颈癌细胞的干预性研究
黄 浩1 , 凃 欣2 , 余南才1 , 吴文莉1 , 刘 倩1 , 马 威1 , 郝建军1 , 易艳东1
Constructed Eukaryotic Expression Plasmid of Small Hairpin RNA (shRNA) of PCNA and Investigated the Inhibitory Effect on Hela Cell
Huang Hao1 , T U Xin2 , YU Nan-cai1 , W U Wen-li1 , LIU Qian1 , M A Wei1 , HA O Jian-jun1 , YI Yan-dong1
1. Center of Ex perimenta l Medicine , Wuhan First Hospital , Wuhan 430022, China ;2. H uman Genome Research Center , H uazhong University of S cience & Technolog y
Abstract:Objective Constructed eukary otic e xpression plasmid of small hairpin RN A (sh RN A) o f PC-N A , then expre ssed plasmid in Hela cells and investig ated the inhibito ry effect of shRN A of PCN A on Hela ce ll ca rcino ma cell prolifera tion. Methods T he cDN A shRN A the prime of PCN A w as inserted into do wnstream of the vecto r pG enesil-1 to obtain the reco mbina nt euka ryo tic e xpression plasmid pGenesil-1-PCN A1-4 w hich we identified with the me tho ds o f enzy me dige stion and sequence analy sis. T he results were co nsistent with w hat we expected. A nd then transfected the recombinant plasmid pGe nesil-1-PC-N A 1-4 into eukary otic Hela cells by ca tionic po lyme r-mediated transfection. T he inhibition o f the Hela cell carcino ma cell proliferation w as e stimated by immunohistochemistry and western blo t method , the cell cy cle wa s analy sed by flow cy tomet ric. Results shRN A of PCN A inhibited the g ro wth rate o f He la cell and a rrested prolifera tion of H ela cell in phag e of G0 /G1-S. Conclusion sh RNA of P CNA might be effective in the behavio r o f Hela cell lines and inhibited the prolifera ting cell nuclear antig en by inhibiting e xpressio n of PCN A. T his result laid the founda tion fo r further researching in g ene the rapy of ute rine ce rvix carcino ma.
Key words:U terine cervix carcino ma ;Pro life rating cell nuclear antig en;Small hairpin RN A ;H ela cell
摘 要:目的 构建 P CNA 的小发夹结构 RNA(shRN A)的真核表达载体并在 Hela 细胞表达, 同时观察 PCN A 的 shRN A 对人 He la 细胞株体外增殖的影响及生物学特性的改变。 方法 将 P CNA 的 cD-N A 的 shRN A 引物插入真核表达载体 pGenesil-1 , 构建真核表达质粒 pG ene sil-1-PCN A1-4, 并通过酶切和测序等方法进行鉴定, 将真核表达质粒 pG enesil-1-P CN A 1-4 转染子宫颈癌细胞, 运用 Western blo t 检测 PCN A 的蛋白表达, 流式细胞仪分析细胞周期变化。 结果 PCNA 的 shRN A 能显著抑制人 Hela 细胞的生长, 阻滞细胞 G 0 /G1 —S 期, PCN A 的蛋白表达同时受到抑制。 结论 PCN A 的 shRN A 能显著抑制人 He la 细胞的生长, 其抑制作用可能通过阻断 P CNA 蛋白表达实现, 实验结果为进一步研究 PC-N A 的 shRN A 对子宫颈癌的基因治疗奠定了基础。
关键词:子宫颈癌:增殖细胞核抗原;小发夹结构 RN A ;子宫颈癌细胞
中图分类号:R737. 33 文献标识码:A 文章编号:1000-8578(2006)09-0662-03
0 引言
肿瘤的发生与基因突变及细胞增殖有关。增殖细胞核抗原(Prolife ra ting cell nuclear antigen , PC-NA)是在细胞周期 S 期广泛表达的一种核蛋白, 是一种仅在增殖细胞中合成和表达的 36KD 多肽 , 其功能是 DNA 聚合酶δ的重要辅助蛋白 ,在 DNA 合成中是绝对必需的, 在细胞增殖过程中有重要意义 , PCNA 阳性表达说明该细胞正处于增殖状态 。因
收稿日期:2005-08-24 ;修回日期:2005-11-09
作者单位:1. 430022 武汉市第一医院实验中心;2. 华中科技大学人类基因组研究中心
此 , PCNA 作为一项评估细胞增殖状态的指标不仅用于病理学研究, 而且近年来在肿瘤研究中的应用日渐增多[ 1] 。
RNA 干预(RNA interference , RNAi)本质是一种双链 RNA(double-stranded RN A , dsRNA)分
子在 m RNA 水平上关闭相应序列基因的表达或使
其沉默的过程,也就是序列特异性的转录后基因沉默[ 2] (po st-transcriptional gene silencing , PTGS )。 shRNA 是 45 - 50-m er 的小发夹结构 RNA (sm all hairpin RNA , shRNA ), 通过将其转染到细胞。 shRNA 在细胞内会自动被加工成为 siRNA , 从而引发基因沉默或者表达抑制[ 3] 。
我们根据 PCNA 的 cDNA 的序列设计 shRNA 的引物 ,插入真核表达载体 pGenesil-1 , 构建正确的真核表达质粒 , 见图 1 , 导入 Hela 细胞中并研究其产生 siRNA 对 H ela 细胞干预的影响。为 RNAi 干预技术对肿瘤的基因治疗提供了实验理论和基础。
1 材料与方法
1. 1 细胞培养
He La 细胞引自武汉大学生命科学院, 培养于含 10 %小牛血清的 DM EM 的培养液中, 37 ℃5 % 的 CO2 条件下培养 ,0. 3 %的胰酶消化和传代。
1. 2 shRNA 设计和合成
根据 PCNA 基因序列(NM_ 182649), shRNA
设计规则及 blast 同源搜索选取 、设计四对引物及一对对照引物 ,每一对引物上游含 Bam H Ⅰ切点之后GA TCC 的粘性末端, 引物下游互补端含 Hind Ⅲ 切点的互补的 TTCGA 粘性末端 ,武汉市晶赛生物技术有限公司合成。
1. 3 PCNA 的 shRNA 的真核表达载体的构建
将真核表达载体 pGenesil-1 和经 Bam H Ⅰ ,
Hind Ⅲ双酶切后与纯化的含相应粘性末端的 PC-
NA 基因的 shRNA 四对引物片段和一对对照引物
片段 ,进行线性连接 ,连接产物转化大肠杆菌感受态细胞 DH5α,经小量提取质粒测序鉴定 。构建的表达质粒称 pGenesil-PCNA-1 、 pGenesil-PCNA-2 、 pGenesil-PCNA-3 、pGene sil-PCNA-4 、pGenesil-PC-NA-H K 。
1. 4 阳离子聚合物(梭华 - So fastTM /DNA 试剂盒)介导的细胞转染
细胞培养至 40 %~ 60 %汇合, 配制不同浓度的pGenesil-PCNA-1-4(浓度 5μg /ml 、7. 5μg /ml 、10μg / ml 、12. 5μg /ml 、15μg /ml)梭华- Sofast TM /DNA 复合物,进行转染,具体操作步骤见试剂盒说明书。
1. 5 流式细胞仪(FCM)检测
收集 1. 0 ×106 细胞, 用 70 %冷乙醇固定, 加 rNaseA (终浓度 50μg /ml),用 37 ℃水浴 1h , 加碘化丙啶(PI , 终浓度 20μg /ml), 暗处冰浴染色 1h 。用流式细胞仪检测细胞周期分布 , 用通过 M odF-
itLT 3. 1 软件分析。
1. 6 Western-blo t 定量检测 PCNA 蛋白
转染细胞如1. 4 , 收集转染及正常的细胞, 裂解液裂解 ,取 20μl 裂解样品液, 进行 SDS-PAGE 蛋白电泳, 表达产物电转移至硝酸纤维素膜上 , 进行 Western-blot 反应 , 通过 BandScan 5. 0软件对杂交图进行分析 ,以β-actin 做为定量 Marker ,20pmo l 为定量单位。
1. 7 统计学分析应用
t 检验进行差异分析,以 P <0. 05为差异有显著性意义。
2 结果
2. 1 PCNA shRNA 对细胞增殖的影响
2. 1. 1 细胞光镜观察见图 2 、3 。
图 2 未转染的 Hela 细胞 24h 后细胞形态(×200)
图 3 转染了 pGenesil-PCNA-1-4 Hela 细胞 24h 后细胞形态(×200)
由上图可知正常细胞呈致密的上皮 , 在转染了四种引物的真核表达载体 24h 后, 细胞都发生显著变化,周边细胞脱落死亡, 细胞形态呈梭形 ,中间细胞聚集成团 ,类似于孤岛状 。
2. 2 流式细胞仪(FCM)检测细胞周期 见图 4A 、
B 。
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肿瘤防治研究 2006 年第 33 卷第 9 期 |
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利用反义技术特异地阻断某一基因功能已被证 |
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实是可行的。应用反义技术封闭 PCNA 的研究,目 |
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前主要集中在研究增殖性血管性疾病, 仅有少数报告 |
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研究增殖性肾病和胃癌的治疗[ 5] 。但至今未见应用 |
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PCNA 的 shRNA 技术封闭 Hela 细胞增殖的报道。 |
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实验中我们通过流式细胞术分析细胞周期发现 |
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pGene sil-PCNA-1-4 各组转染的肿瘤细胞中, G |
1 |
期 |
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图 4 A:未转染的 Hela 细胞 24h 后细胞周期分析;B :转染 |
细胞数明显增多, S 期细胞数明显减少, G2 期细胞 |
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数减少, pGenesil-PCNA-4 |
组减少最显著。提示 |
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pGenesil-PCNA-4 , 12. 5mg /ml, 24h 后细胞周期分析 |
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pGene sil-PCNA-1-4 可能延缓了肿瘤细胞由 G |
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期 |
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1 |
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通过 ModFitLT 3. 1 软件分析以上细胞周期图 , |
向 S 期的过渡 。证实我们构建的 shRNA 真核表达 |
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正常 H ela 细胞 24h 后, |
G0 ~ G1 期占37. |
46 %,S 期 |
载体都具有有效性。 |
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39. 23 %,G2-M 期23. 31 %, 转染12. 5μg /ml pGene- |
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我们通过 Western blot 及 BandScan 5. 0软件 |
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sil-PCNA-4 24h 后 G0 |
~ G1 |
期占 57. 23 %, S 期 |
分析了转染 5 |
g /m l 7. 5 |
g /m l 10 g /ml 12. 5 |
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g / |
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29. 12 %,G2-M 期13. 65 %。 |
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μ |
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、 |
μ |
、 μ |
、 |
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μ |
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m l 、15μg /ml 各种浓度的 pGenesil-PCNA-1-4 ,将结 |
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在分析 pGenesil-PCNA-1-4 各组转染的肿瘤细 |
果与对照组比较, 发现表达 PCNA 蛋白量均有显著 |
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胞中 ,我们发现 G |
1 |
期细胞数明显增多 ,S 期细胞数 |
性差异。转染 pGenesil-PCNA-4 组的 PCNA 蛋白 |
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明显减少 , 在转染 pGenesil-PCNA-4 时 G2 期细胞 |
量降低最为显著, 转染各种浓度质粒的 PCNA 蛋白 |
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数明显减少。 |
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表达量均明显下降, |
进一步证实了我们构建的四种 |
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2. 3 Western-blot 检测 PCNA 蛋白 |
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shRNA 真核表达载体均具有有效性, 其中 ,pGene- |
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各种质粒转染 12. 5μg /m l 时 Western-blo t 杂 |
sil-PCNA-4 的有效性最好。实验结果表明 :我们设 |
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交图 ,见图 6 。 |
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计的四种 PCNA 的 shRNA 不仅抑制了 H ela 细胞 |
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的生长 、DNA 和 PCNA 蛋白合成, 而且明显阻滞了 |
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H ela 细胞由 G |
/G |
期进人 S 期 。而相同浓度的对 |
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0 |
1 |
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照 pGene sil-PCNA-H K 对 H ela 生长无明显抑制作 |
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Western-blot 杂交图 |
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用 ,提示PCNA 的 shRNA 对 H ela 细胞抑制作用具 |
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图 6 |
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有特异性。 |
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由图 6 可知 ,没有转染的正常 H ela 细胞和转染 |
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应用 PCNA 基因 shRNA 阻断特定的基因表达, |
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了 pGenesil PCNA H K |
、 |
pGenesil PCNA |
-1-4 |
质粒 |
可以明显抑制 Hela 细胞的增殖, 改变肿瘤细胞的生 |
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- |
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- |
KD 的 |
- |
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物学行为,为合理地利用反义技术改变和逆转致病瘤 |
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的 H ela 细胞均可见在 |
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actin M arke r 略 |
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43 |
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β- |
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细胞恶性表型的肿瘤基因治疗提供了一个方向。 |
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下方可见清晰杂交带 ,我们将没有转染的正常 H ela |
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细胞与转染12. 5μg /m l 时的 pGene sil-PCNA-H K 、 |
参考文献: |
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pGenesil-PCNA-1-4 的 24h 后 w estern-blo t 杂交图 |
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进行 BandScan 5. 0软件分析, 以β-actin 为内参定量 |
[ 1] |
Li L, Da J , |
Stucki |
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M , et |
al. |
In t J An tip roliferative activity |
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Marker ,得出结果分别为11. 84 、11. 32 、1. 14 、4. 43 、 |
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and toxicity of 2-meth oxy estradiol in cervical cancer xenog raft |
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mice[ J] . Gy necol Cancer , 2005 , 15(2):301-307. |
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1. 14 、0. 51 ,转染了四种真核表达的质粒细胞表达 |
[ 2] |
Kuninger D , |
Stau ffer D , Eftekhari S , et al. Gene disru ption |
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PCNA 的蛋白量均显著降低, 其中转染 pGenesil- |
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by regulated |
sho rt interfering RNA expression , |
u sing a |
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tw o- |
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adenovirus sy stem[ J] H um Gene T her , 2004 , |
15(2):1287- |
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PCNA-4 最显著 。 |
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1292. |
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[ 3] |
Spanku ch B, |
Matthess Y , Knech t R , et al. Cancer inhibition |
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3 讨论 |
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in nude mice after systemic application of U 6 promoter-driven |
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sh ort hairpin[ J] . J Natl Cancer In st , 2004 , 96(11):862-872. |
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子宫颈癌是女性最常见的恶性肿瘤之一, 它严 |
[ 4] |
Arrighi JF , |
Pion |
M , W iznerowicz M . Lentivirus-mediated |
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重威胁妇女的生命健康 , 但其发病机制尚不清楚 。 |
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RNA interference of DC-SIGN exp ression inhibits human im- |
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munodeficiency |
viru s transmission from dendritic cells |
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to T |
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已有很多资料表明:子宫颈癌 PCNA 表达率明显高 |
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cells[ J] . J Virol , 2004 , 78(20):10848-10855. |
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于非癌性子宫颈上皮 ,且在子宫颈癌中 PCNA 表达 |
[ 5] |
H asan S , Stucki M , |
H assa PO . Regulation of human flap en- |
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率随分化程度的降低而增高 ,表明 PCNA 的表达能 |
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donuclease-1 activity by acetylation th rou gh the transcriptional |
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coactivator p300[ J] . |
Mol C ell , |
2001 , 7(6):1221-1231. |
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作为反映子宫颈癌细胞增殖活性的指标[ 4] 。 |
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[ 编辑:周永红] |
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