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靶向 siRN A 对人子宫颈癌细胞的抑制作用

发布者:余南才工作室 发布时间:2018-06-09 浏览量:265

靶向 siRN A 对人子宫颈癌细胞的抑制作用

 

黄 浩1 , 2   余南才2   江 俊3     刘 倩2     马 威2     郝建军2        易艳东2

 

1华中科技大学同济医学院基础医学院病原生物学系, 武汉 430030

2 武汉市第一医院中心实验室, 武汉 430022

3 华中科技大学同济医学院保健科, 武汉 430030

 

摘要 目的 构建增殖细胞核抗原(PCN A)的小发夹结构 RN A(shRN A)的真核表达载体并在人 HeL a 细胞表达,同时观察 PCN A shRN A 对 He La 细胞体外增殖及生物学特性的影响。 方法 将 PCN A cDN A 的 shRN A 引物插入真核表达载体 pGenesil-1 , 构建真核表达质粒 pGenesil-1-PCN A(1-4), 并通过酶切和测序等方法进行鉴定, 将真核表达质粒 pGenesil-1-PCN A(1-4)转染 HeL a 细胞, 运用 We ste rn blo t 方法检测 PCN A 蛋白的表达, 流式细胞仪分析细胞周期变化。结果 PCN A shRN A 能显著抑制人 He La 细胞的生长, 阻滞细胞于 G0 /G1 期 , P CNA 的蛋白表达同时受到抑制。 结论 PCN A shRNA 能显著抑制人 He La 细胞的生长, 其抑制作用可能通过阻断 P CNA 蛋白表达实现, 实验结果为进一步研

 

究 P CNA shRN A 对子宫颈癌的基因治疗奠定了基础。

 

关键词 子宫颈癌; 增殖细胞核抗原; 小发夹结构 RN A

 

中图法分类号 R737. 33

 

Inhibitory Effect of Targeted Small Hairpin RNA on the Growth of Cervical Carcinoma Cells

 

 

 

H uang H ao1 , 2 , Yu Nancai2 ,

Jiang Jun3  et al

1

Department of

Pathogentic Biology , S chool o f

Basic Medica l S ciences, Tong ji Medical

 

College , Huaz hong University o f Science and T echnology , Wuhan 430030

2

Center o f E xperimental Medicine , Wuhan F irst Hospital , Wuhan 430022

3

Department of

Health , T ongj i Medical College , Huazhong

University o f Science and T echnology , Wuhan 430030

 

Abstract Objective T o construct eukary otic expressio n plasmid of small hairpin RN A (shRNA) targ eting PCN A , e x-pre ss plasmid in He La cells a nd investig ate the inhibitory effect of shRN A ta rge ting PCN A on proliferation and biolo gical fea-ture s o f He La cells in v itro. Methods T he cDN A shRNA prime of P CNA wa s inserted into do wnstream of the vecto r pG ene-

 

sil-1 to obtain the recombinant eukary o tic ex pression pla smid pGe nesil-1-PCN A 1-4 w hich w as identified w ith the metho ds of e n-zyme dig estion and sequence analy sis. pG ene sil-1-PCN A1-4 was tranfec ted into H eLa cells. T he ex pression o f PCN A pro tein

 

was de tected by Western blo t and the chang es o f cell cy cle by flow cy tometry. Results shRN A of PCN A co uld sig nificantly in-hibit the g ro w th of HeL a ce lls and a rrest H eLa cells in G 0 /G1 - S phase. Also the e xpressio n of P CNA pro tein w as inhibited.

 

Conclusion shRN A o f PCN A co uld sig nificantly inhibit the g ro w th o f HeL a cell lines by suppressing the ex pression of PCN A protein, which lay ed the foundation for furthe r research on ge ne therapy o f ce rvical carcinoma.

Key words    cervical carcino ma ; pro life rating cellula r nuclea r antigen ; small hairpin RN A


 

RNA 干预(RNA interference , RNAi)本质是一种双链 RN A(do uble-stranded RNA , dsRNA)分

 

子在 m RNA 水平上关闭相应序列基因的表达或使其沉默的过程, 也就是序列特异性的转录后基因沉

 

[ 1] (post-transcriptional gene silencing , PTGS)。 shRNA 是 45-50-mer 的小发夹结构 RNA (small hairpin RNA , shRNA), 通过将其转染到细胞 , shRNA 在细胞内会自动被加工成为 siRNA , 从而

 

引发基因沉默或者表达抑制[ 2]

 

增殖细胞核抗原(proliferating cell nuclear anti-


 

黄 浩, 男, 1972 生, 博士研究生



 

 

gen , PCNA)是在细胞周期 S 期广泛表达的一种核蛋

 

白 ,是一种仅在增殖细胞中合成和表达的 36 kD(1 kD

 

=0. 992 1 ku)多肽[ 3] 。我们根据 PCNA cDNA 的序列设计 shRNA 的引物,插入真核表达载体 pGenesil-1 ,构建正确的真核表达质粒,导入 HeLa 细胞中,并

 

研究 siRNA 对 HeLa 细胞生长的影响。为 RNAi 干

 

预技术应用于肿瘤的基因治疗提供实验依据。

 

1       材料与方法

 

1.  1  细胞培养

 

H eLa 细胞来自武汉大学生命科学院 , 培养于含 10 %小牛血清的 DMEM 培养液中, 37 ℃,5 %的


黄 浩等. 靶向 siRNA 对人子宫颈癌细胞的抑制作用

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CO2 条件下培养 ,采用 0. 3 %的胰酶消化和传代 。

 

1. 2    shRNA 设计和合成

 

根据 PCNA 基因序列(NM_ 182649), shRNA 设计规则及 blast 同源搜索选取 、设计 4 对引物及 1 对对照引物 , 每 1 对引物上游含 B amH Ⅰ 切点后 GA TCC 的黏性末端, 引物下游互补端含 Hind Ⅲ切点的互补的 T TCGA 黏性末端 , 引物均由武汉市晶赛生物技术有限公司合成。

 

1. 3    PCNA shRNA 真核表达载体的构建

 

将真核表达载体 pGenesil-1(武汉市晶赛生物

 

技术有限公司)经 BamH Ⅰ 、H ind Ⅲ双酶切 ,并与纯化的 PCNA shRNA 4 对引物片段和 1 对对照引物片段进行线性连接 ,连接产物转化大肠埃希菌感受态细胞 DH 5α, 经小量提取质粒测序鉴定 。构建的表达质粒称 pGenesil-PCNA-1 、pGenesil-PCNA-2 、 pGenesil-PCNA-3 、pGene sil-PCNA-4 、pGenesil-PC-NA-H K 。

 

1.  4  阳离子聚合物介导的细胞转染

 

细胞培养至 40 %~ 60 %汇合, 配制不同浓度的pGenesil-PCNA(1-4)和 pGenesil-PCNA-H K , 分别

 

为 5. 0 、7. 5 、10. 0 、12. 5 、15. 0 μg /m l 梭华-Sofast TM / DNA 复合物,进行转染,具体操作步骤见试剂盒(武汉市大风生物有限公司)说明书。

 

1.  5  流式细胞仪(FCM)检测

 

收集 1. 0 ×106 细胞, 用 70 %冷乙醇固定, 加 RnaseA (终浓度 50 μg /m l), 用 37 ℃水浴 1 h , 加碘化丙啶(PI , 终浓度 20 μg /ml),避光冰浴染色 1 h 。用流式细胞仪检测细胞周期分布, 通过 M odF-itLT3. 1 软件分析结果 。

 

1. 6    Western blot 方法定量检测 PCNA 蛋白

 

将转染及未转染细胞 ,以裂解液裂解后, 收集细

 

胞 , 取 20 μl 裂解样品液 ,SDS-PAGE 蛋白电泳, 表达产物电转移至硝酸纤维素膜上 , 进行 Western blo t 反应, 通过 BandScan5. 0 软件对杂交图进行分析,以 β-actin 作为定量 Marker , 20 pmo l 为定量单位。

 

1.  7  统计学分析

 

采用 t 检验进行统计学分析 , 以 P <0. 05 为差异有显著性意义。

 

2       结果

 

2. 1    PCNA shRNA 对细胞增殖的影响

 

未转染细胞呈致密的上皮, 在转染了 4 种引物的真核表达载体 24 h 后 , 细胞都发生显著变化 , 周边细胞脱落死亡 ,细胞形态呈梭形 ,中间细胞聚集成


 

团 ,类似于孤岛状 。见图 1 。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

A  :未转染的 HeL a 细胞;B :转染了 pG enesil-PCN A(1-4)24 h 后 He La 细胞

 

图 1  H eLa 细胞形态观察(×200)

 

2.  2  流式细胞仪(FCM)检测细胞周期分布

 

通过 ModFitLT3. 1 软件分析细胞周期图, 未转

 

染 HeLa 细胞培养 24 h 后, G0 /G1 期细胞比例为

 

38. 42 %,S 期 38. 27 %,G2 /M 期 23. 31 %, 转染 12. 5 μg /ml pGenesil-PCNA-4 ,24 h 后G0 /G1 期占56. 45 %, S 期 30. 32 %,G2 /M 期 13. 32 %。

 

在 pGenesil-PCNA(1-4)转染的各组肿瘤细胞中 ,G0 /G1 期细胞数明显增多(P <0. 05),S 期细胞数明显减少(P <0. 05), 在转染 pGenesil-PCNA-4

 

时G2 期细胞数明显减少(P <0. 05)。见表 1 。提示 pGene sil-PCNA(1-4)可能延缓了肿瘤细胞由 G1 期

 

向 S 期的过渡 。

 

表 1  流式细胞术分析细胞周期(x ±s , %)


 

组别

G 0 /G 1

 

S

G2 /M

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

未转染 H eLa 细胞

38.

42

±1. 22

38.

27

±1. 61

23.

31

±0. 85

 

 

pG enesil-PCNA-HK

36.

13

±2. 52

37.

43

±1. 71

26.

44

±2. 92

 

 

pG enesil-PCNA-1

50.

18

±7. 31 △▲ 27.

71

±6. 22 △▲

22.

11

±1.

93

 

 

pG enesil-PCNA-2

49.

15

±5. 62 △▲ 26.

66

±4. 31 △▲

24.

19

±3.

61

 

 

pG enesil-PCNA-3

52.

64

±5. 62 △▲ 28.

37

±7. 34 △▲

18.

99

±2.

81

 

 

pG enesil-PCNA-4

56.

45

±7. 32 △▲ 30.

32

±6. 41 △▲

13.

32

±2.

52

△▲

 

 

 

与未转染组比较 P <0.

05 ;与转染 pG enesil-PCN A-

H K 组比较 P <0. 05

 

 

 

 

 

 

 

 

 


18                                                华中科技大学学报(医学版)           2007 年2 月第 36 卷第 1 期



 

2. 3    Western blot 方法检测 PCNA 蛋白

 

转染了 pGenesil-PCNA-H K 、pGenesil-PCNA (1-4)质粒(浓度为 12. 5 μg /m l)的 H eLa 细胞均可见在 β-actin M arker 略下方的清晰杂交带。采用 BandScan5. 0 软件将没有转染的 He La 细胞与转染 pGenesil-PCNA-H K 、pGene sil-PCNA (1-4)24 h 后

 

的 H eLa 细胞的 Western blo t 杂交图(图 2)进行分析, 以 β-actin 为内参定量 M arker , 将其定为 20 pm ol , 得出结果分别为 11. 84 、11. 32 、1. 14 、4. 43 、 1. 14 、0. 51 。转染了 4 种真核表达质粒的细胞 ,其表达 PCNA 的蛋白量均显著降低 ,其中以转染 pGen-esil-PCNA-4 最显著 。

 

 

 

 

 

 

 

1:β-actin ;2 :未转染 HeL a 细胞;3:转染 pG enesil-PC-

 

NA-H K ;4~ 7 :转染 pG enesil-PCN A(1-4)

 

图 2  We stern blot 杂交图

 

 

3       讨论

 

子宫颈癌是女性最常见的恶性肿瘤之一。它严重威胁妇女的生命健康 , 但其发病机制尚不清楚 。已有很多资料表明:子宫颈癌 PCNA 表达率明显高于非癌性子宫颈上皮 ,且在子宫颈癌中 PCNA 表达率随分化程度的降低而增高 ,提示 PCNA 的表达能作为反映子宫颈癌细胞增殖活性的指标[ 4]

 

利用反义技术特异地阻断某一基因功能已被证实是可行的。应用反义技术封闭 PCNA 的研究, 目前主要集中于增殖性血管性疾病 ,例如用于对增殖性肾病和胃癌的治疗[ 5] 。但至今未见应用 PCNA 的 shRNA 技术封闭 He La 细胞增殖的报道 。

 

本研究通过流式细胞术分析细胞周期发现pGenesil-PCNA(1-4)各组转染的肿瘤细胞中 ,G1 期细胞数明显增多 ,S 期细胞数明显减少,G2 期细胞数


 

 

减少,pGenesil-PCNA-4 组各指标的变化最为显著。提示 pGenesil-PCNA(1-4)可能延缓了肿瘤细胞由 G1 期向 S 期的过渡 。证实我们构建的 shRNA 真核表达载体都具有效性。

 

通过 Western blo t 及 BandScan5. 0 软件分析了转染 5. 0 、7. 5 、10. 0 、12. 5 、15. 0 μg /m l 各种浓度

 

的 pGenesil-PCNA(1-4), 将结果与对照组比较, 发

 

现转染各种浓度质粒 H eLa 细胞的 PCNA 蛋白表

 

达量均明显下降。转染 pGenesil-PCNA-4 组的 PC-

 

NA 蛋白量降低最为显著, 进一步证实了我们构建

 

的 4 种 shRNA 真核表达载体均具有有效性 ,其中, pGene sil-PCNA-4 的有效性最好。实验结果表明:

 

4 种 PCNA 的 shRNA 不仅抑制了 He La 细胞的生

 

长 、DNA 和 PCNA 蛋白合成, 而且明显阻滞了 H e-La 细胞由 G0 /G1 期进入 S 期 。而相同浓度的对照 pGene sil-PCNA-H K 对 He La 细胞生长无明显抑制作用,提示 PCN A 的 shRNA 对 He La 细胞抑制作用具有特异性。

 

应用 PCNA 基因 sh RNA 阻断特定的基因表

 

达 ,可以明显抑制 HeLa 细胞的增殖 ,改变肿瘤细胞的生物学行为,这为利用反义技术改变和逆转致病瘤细胞恶性表型的肿瘤基因治疗提供了一个方向。

 

参   考 文 献

 

[ 1]    K UNINGER D , S TAUFFER D , EFTEKHARI S , et al.  Gene

 

disruption by regulated short interfering RNA expression, using a tw o-adeno viru s system[ J] . Hum Gene Ther, 2004 , 25(2):408-

412.

 

[  2] SPANKUCH B , M ATT HESS Y , KNECHT R , et al. Cancer in-hibition in nude mice after systemic application of U6 promoter-driven short hairpin[ J] . J Natl Cancer Ins t , 2004 , 96(11):862-872.

 

[  3] LI L, DA J , S TUCKI M , et al. Antiproliferative activity and tox-icity of 2-methoxyestradiol in cervical cancer xenograft mice[ J] .

Gynecol Cancer , 2005 ,15(2):301-307.

 

[  4]  ARRIGHI J F, PION M , WIZNE ROWICZ M .  Lentivirus-media-ted RNA interference of DC-SIGN expression inhibits human im-

munodeficiency virus transmission from dendritic cells to T cells

[ J] .  J Virol , 2004 , 78(20):10848-10855.

 

[  5] H ASAN S , S TUCKI M , HASSA P O . Regulation of human flap endonuclease-1 activity by acetylation through the transcriptional coactivator p300[ J] . Mol Cell ,2001 , 7(6):1221-1231.

(2005-08-30  收稿)